用primer设计引物时如何将设计好的引 primer5引物设计教程
用primer5设计PCR引物时怎样在编辑引物的长度
不能有效的和模板进行结合，而出现引物自身配对结合的情况导致二聚提的出现，比如20uLPCR体系中，一般10pmol/，来摸索一个合适的退火温度，也可有效地减少二聚提的出现。
引物设计可以使用Primer Premier 5、引物二聚体等，非常方便；其次还可能是PCR体系及反应条件的问题，其中很重要的一个就是引物自身的原因，也就是设计的引物特异性不好，引物二聚体的产生原因比较多，加0.2ul就可以了；还有可能是退火温度的问题；ul的引物.0，这时要适当降低浓度（1）看引物序列里有无回文序列。
（2）不是的，可以做个梯度PCR或降落PCR，如果PCR体系中引物、镁离子以及酶浓度过高等，都容易产生二聚体，操作比较简便，同时它可以自动分析引物是否有发夹结构...
如何用primer5设计PCR引物并转化成pdf格式
于是就将序列导入了点击search 进入下图界面开始设计引物 在此图中有6个部分，红色数字标示 1区，包括三部分，可以选择设计pcr引物，测序引物和杂交探针 2区，pcr 长度，根据需要设置 5区，引物长度。
在接下来的界面里 复制你的序列，一般选auto，也可以手动下面是一个设计 我选择了 正链位于1-400内 负链位于500-910内 产物长度100-600 引物长度为20±1bp 输入后，下游引物所在范围 4区，搜寻模式，包括正链，我们一般选最后一项pairs，出来一组引物 3区，引物的范围，上游引物所在范围，反链等首先打开软件 左上角来操作 file——new——dna sequence 这一项可以把你复制的序列粘贴进去 当然，你也可以选择另一个 file——open——dna sequence 去open一个新的文件，这个是调整的重点，前面是长度，后面是± 6区，选择模式
你好,能和你讨论一下用Primer Premier 5. 0设计引物的一些问题吗？
1、primer 5.0的各类参数是可以自己设置的，变化参数结果就会不一样。
就引物设计而言primer 5.0优于oligo 6.0，一般的方法是用primer 5.0设计，oligo 6.0来检测；2、可以自己自己动手修改，完全没有问题，我自己试过。
一般引物允许20%的不一致，但是在3端最好不要自己修改，3端也不要有发卡结构
怎样用primer premier5.0软件设计引物序列
首先打开软件 左上角来操作 file——new——dna sequence 这一项可以把你复制的序列粘贴进去 当然，你也可以选择另一个 file——open——dna sequence 去open一个新的文件。
在接下来的界面里 复制你的序列，于是就将序列导入了点击search 进入下图界面开始设计引物 在此图中有6个部分，红色数字标示 1区，包括三部分，可以选择设计pcr引物，测序引物和杂交探针 2区，搜寻模式，包括正链，反链等，我们一般选最后一项pairs，出来一组引物 3区，引物的范围，上游引物所在范围，下游引物所在范围 4区，pcr 长度，根据需要设置 5区，引物长度，这个是调整的重点，前面是长度，后面是± 6区，选择模式，一般选auto，也可以手动下面是一个设计 我选择了 正链位于1-400内 负链位于500-910内 产物长度100-600 引物长度为20±1bp 输入后，出现下图界面 共有1000多条引物 点击ok
如何设计已知序列的引物
可以下载专门设计引物的生物学软件，如primer premier，将已知序列导入该程序，程序会自动生成一条正向引物和一条反向引物，并计算出Tm值.引物的长度在preference里可以修改，如果是已知序列的引物，能修改的也就是长度了，两条引物尽量选择Tm值比较接近的就可以了.
PCR引物设计怎么做 啊？跪求！
PCR引物设计的目的是为了找到一对合适的核苷酸片段，使其能有效地扩增模板DNA序列。
因此，引物的优劣直接关系到PCR的特异性与成功与否。
要设计引物首先要找到DNA序列的保守区。
同时应预测将要扩增的片段单链是否形成二级结构。
如这个区域单链能形成二级结构，就要避开它。
如这一段不能形成二级结构，那就可以在这一区域设计引物。
现在可以在这一保守区域里设计一对引物。
一般引物长度为15~30碱基，扩增片段长度为100~600碱基对。
让我们先看看P1引物。
一般引物序列中G+C含量一般为40%~60%。
而且四种碱基的分布最好随机。
不要有聚嘌呤或聚嘧啶存在。
否则P1引物设计的就不合理。
应重新寻找区域设计引物。
同时引物之间也不能有互补性，一般一对引物间不应多于4个连续碱基的互补。
引物确定以后，可以对引物进行必要的修饰，例如可以在引物的5′端加酶切位点序列；标记生物素、荧光素、地高辛等，这对扩增的特异性影响不大。
但3′端绝对不能进行任何修饰，因为引物的延伸是从3′端开始的。
这里还需提醒的是3′端不要终止于密码子的第3位，因为密码子第3位易发生简并，会影响扩增的特异性与效率。
综上所述我们可以归纳十条PCR引物的设计原则：① 引物应用核酸系列保守区内设计并具有特异性。
② 产物不能形成二级结构。
③ 引物长度一般在15~30碱基之间。
④ G+C含量在40%~60%之间。
⑤ 碱基要随机分布。
⑥ 引物自身不能有连续4个碱基的互补。
⑦ 引物之间不能有连续4个碱基的互补。
⑧ 引物5′端可以修饰。
⑨ 引物3′端不可修饰。
⑩ 引物3′端要避开密码子的第3位。
PCR引物设计的目的是找到一对合适的核苷酸片段，使其能有效地扩增模板DNA序列。
如前述，引物的优劣直接关系到PCR的特异性与成功与否。
对引物的设计不可能有一种包罗万象的规则确保PCR的成功，但遵循某些原则，则有助于引物的设计。
1.引物的特异性 引物与非特异扩增序列的同源性不要超过70%或有连续8个互补碱基同源。
2.避开产物的二级结构区 某些引物无效的主要原因是引物重复区DNA二级结构的影响，选择扩增片段时最好避开二级结构区域。
用有关计算机软件可以预测估计mRNA的稳定二级结构，有助于选择模板。
实验表明，待扩区域自由能（△G°）小于58.6lkJ/mol时，扩增往往不能成功。
若不能避开这一区域时，用7-deaza-2′-脱氧GTP取代dGTP对扩增的成功是有帮助的。
3.长度 寡核苷酸引物长度为15~30bp，一般为20~27mer。
引物的有效长度：Ln=2(G+C)+(A+T+,Ln值不能大于38，因为>38时，最适延伸温度会超过Taq DNA聚合酶的最适温度（74℃），不能保证产物的特异性。
4.G+C含量 G+C含量一般为40%~60%。
其Tm值是寡核苷酸的解链温度，即在一定盐浓度条件下，50%寡核苷酸双链解链的温度，有效启动温度，一般高于Tm值5~10℃。
若按公式Tm=4(G+C)+2(A+T)估计引物的Tm值，则有效引物的Tm为55~80℃，其Tm值最好接近72℃以使复性条件最佳。
5.碱基础随机分布 引物中四种碱基的分布最好是随机的，不要有聚嘌呤或聚嘧啶的存在。
尤其3′端不应超过3个连续的G或C，因这样会使引物在G+C富集序列区错误引发。
6.引物自身 引物自身不应存在互补序列，否则引物自身会折叠成发夹状结构牙引物本身复性。
这种二级结构会因空间位阻而影响引物与模板的复性结合。
若用人工判断，引物自身连续互补碱基不能大于3bp。
7.引物之间 两引物之间不应不互补性，尤应避免3′端的互补重叠以防引物二聚体的形成。
一对引物间不应多于4个连续碱基的同源性或互补性。
8.引物的3′端 引物的延伸是从3′端开始的，不能进行任何修饰。
3′端也不能有形成任何二级结构可能，除在特殊的PCR(AS-PCR)反应中，引物3′端不能发生错配。
在标准PCR反应体系中，用2U Taq DNA聚合酶和800μmol/L dNTP（四种dNTP各200μmol/L）以质粒（103拷贝）为模板，按95℃，25s;55℃，25s;72℃，1min的循环参数扩增HIV-1 gag基因区的条件下，引物3′端错配对扩增产物的影响是有一定规律的。
A∶A错配使产量下降至1/20,A∶G和C∶C错七下降至1/100。
引物A：模板G与引物G：模板A错配对PCR影响是等同的。
9.引物的5′端 引物的5′端限定着PCR产物的长度，它对扩增特异性影响不大。
因此，可以被修饰而不影响扩增的特异性。
引物5′端修饰包括：加酶切位点；标记生物素、荧光、地高辛、Eu3+等；引入蛋白质结合DNA序列；引入突变位点、插入与缺失突变序列和引入一启动子序列等。
10.密码子的简并 如扩增编码区域，引物3′端不要终止于密码子的第3位，因密码子的第3位易发生简并，会影响扩增特异性与效率。
特殊目的的引物设计将在有关章节讨论。
随着人们对引物的认识，一些引物的计算机设计程序也应运而生，下面将讨论有关引物计算机设计方法。
现有的引物设计软件有primer5.0比较好。
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